Oryzae productio propter mutationem et variabilitatem climatis in Columbia decrescit.Regulatores incrementi plantarumAdhibitae sunt ut consilium ad calorem in variis culturis reducendum. Ergo, propositum huius studii erat aestimare effectus physiologicos (conductantiam stomatum, contentum chlorophylli totale, rationem Fv/Fm duorum genotyporum oryzae commercialium subiectorum calorei coniuncto (temperaturis altis diurnis et nocturnis), temperaturae canopi et contento aquae relativo) et variabiles biochemicas (malondialdehydum (MDA) et contento acidi prolinici). Primum et secundum experimentum peractum est utens plantis duorum genotyporum oryzae Federrose 67 ("F67") et Federrose 2000 ("F2000"), respective. Utraque experimenta simul analysata sunt ut series experimentorum. Curationes constitutae fuerunt hae: imperium absolutum (AC) (plantae oryzae cultae temperaturis optimis (temperatura diurna/nocturna 30/25°C)), imperium calores (SC) [plantae oryzae subiectae calorei coniuncto tantum (40/25°C). [30°C)], et plantae oryzae sub pressione caloris sollicitae et regulatoribus incrementi plantarum (pressione+AUX, pressione+BR, pressione+CK vel pressione+GA) bis (quinque diebus ante et quinque diebus post pressionem caloris) aspersae sunt. Aspersio SA contentum chlorophylli totale ambarum varietatum auxit (pondus recens plantarum oryzae “F67″ et “F2000″ erat 3.25 et 3.65 mg/g, respective) comparatum cum plantis SC (pondus recens plantarum “F67″ erat 2.36 et 2.56 mg). g-1)” et oryzae “F2000″, applicatio foliaris CK etiam conductantiam stomatum plantarum oryzae “F2000″ generaliter emendavit (499.25 vs. 150.60 mmol m-2 s) comparata cum moderatione pressionis caloris. Sub pressione caloris, temperatura coronae plantae 2-3°C decrescit, et contentum MDA in plantis decrescit. Index tolerantiae relativae ostendit applicationem foliarem CK (97.69%) et BR (60.73%) posse adiuvare ad problema stressus caloris coniuncti, praesertim in plantis oryzae F2000, minuendum. In conclusione, aspersio foliaris BR vel CK considerari potest ut strategia agronomica ad effectus negativos condicionum stressus caloris coniuncti in mores physiologicos plantarum oryzae minuendos.
Oryza (Oryza sativa) ad familiam Poacearum pertinet et una ex cerealiis maxime cultis in mundo est una cum maize et tritico (Bajaj et Mohanty, 2005). Area oryzae culta est 617 934 hectarearum, et productio nationalis anno 2020 erat 2 937 840 talentorum cum proventu medio 5.02 talentorum/ha (Federarroz (Federación Nacional de Arroceros), 2021).
Calefactio globalis oryzae fruges afficit, varia genera pressionum abioticarum, ut temperaturas altas et tempora siccitatis, ducit. Mutatio climatis temperaturas globales augere facit; temperaturae 1.0-3.7°C in saeculo XXI augeri praedicuntur, quod frequentiam et intensitatem stressoris caloris augere potest. Temperaturae ambientales auctae oryzam affecerunt, facientes ut proventus segetum 6-7% decrescant. Ex altera parte, mutatio climatis etiam ad condiciones ambientales non adversas frugibus ducit, ut tempora siccitatis gravis vel temperaturas altae in regionibus tropicis et subtropicalibus. Praeterea, eventa variabilitatis, ut El Niño, stressoris caloris ducere et damnum segetum in quibusdam regionibus tropicis exacerbare possunt. In Columbia, temperaturae in regionibus oryzae producentibus 2-2.5°C ad annum 2050 augeri praedicuntur, productionem oryzae minuentes et fluxus productorum ad mercatus et catenas commeatus afficientes.
Pleraque oryzae segeta in regionibus coluntur ubi temperaturae prope optimum spatium ad incrementum segetum sunt (Shah et al., 2011). Relatum est optimas temperaturas medias diurnas et nocturnas pro...Incrementum et progressus oryzaeGeneraliter 28°C et 22°C respective sunt (Kilasi et al., 2018; Calderón-Páez et al., 2021). Temperaturae supra haec limina periodos stressis caloris moderati ad gravem per stadia sensibilia evolutionis oryzae (cultivatio, antesis, floratio, et impletio granorum) causare possunt, ita negative afficientes proventum granorum. Haec reductio in proventu praecipue debetur longis periodis stressis caloris, quae physiologiam plantarum afficiunt. Ob interactionem variorum factorum, ut duratio stressis et maxima temperatura attingita, stress caloris seriem damni irreversibilis metabolismo et evolutioni plantarum inferre potest.
Stressus caloris varios processus physiologicos et biochemicos in plantis afficit. Photosynthesis foliorum est unus e processibus maxime obnoxiis stressui caloris in plantis oryzae, cum celeritas photosyntheticae 50% decrescat cum temperaturae diurnae 35°C excedunt. Responsa physiologica plantarum oryzae variantur secundum genus stressus caloris. Exempli gratia, celeritas photosynthetica et conductantia stomatum inhibentur cum plantae temperaturis diurnis altis (33–40°C) vel temperaturis diurnis et nocturnis altis (35–40°C interdiu, 28–30°C) exponuntur. C significat noctem (Lü et al., 2013; Fahad et al., 2016; Chaturvedi et al., 2017). Temperaturae nocturnae altae (30°C) inhibitionem moderatam photosyntheticae causant sed respirationem nocturnam augent (Fahad et al., 2016; Alvarado-Sanabria et al., 2017). Neglecto tempore stressis, stress caloris etiam afficit contentum chlorophylli foliorum, rationem fluorescentiae variabilis chlorophylli ad maximam fluorescentiam chlorophylli (Fv/Fm), et activationem Rubisco in plantis oryzae (Cao et al. 2009; Yin et al. 2010). (Sanchez Reynoso et al., 2014).
Mutationes biochemicae sunt alius aspectus adaptationis plantarum ad accentum caloris (Wahid et al., 2007). Contentum prolini adhibitum est ut index biochemicus accentus plantarum (Ahmed et Hassan 2011). Prolinum munus magnum agit in metabolismo plantarum, cum agit ut fons carbonii vel nitrogenii et ut stabilisator membranae sub condicionibus altae temperaturae (Sánchez-Reinoso et al., 2014). Altae temperaturae etiam stabilitatem membranae afficiunt per peroxidationem lipidorum, ducens ad formationem malondialdehydi (MDA) (Wahid et al., 2007). Ergo, contentum MDA etiam ad intellegendam integritatem structuralem membranarum cellularum sub accentu caloris adhibitum est (Cao et al., 2009; Chavez-Arias et al., 2018). Denique, accentus caloris coniunctus [37/30°C (dies/nox)] proportionem effluxus electrolyti et contenti malondialdehydi in oryza auxit (Liu et al., 2013).
Usus regulatorum incrementi plantarum (RG) ad effectus negativos stressis caloris mitigandos aestimatus est, cum hae substantiae active implicantur in responsionibus plantarum vel mechanismis defensionis physiologicis contra talem stress (Peleg et Blumwald, 2011; Yin et al. et al., 2011; Ahmed et al., 2015). Applicatio exogena opum geneticarum effectum positivum in tolerantiam stressis caloris in variis culturis habuit. Studia demonstraverunt phytohormonas ut gibberellinas (GA), cytokininas (CK), auxinas (AUX) vel brassinosteroides (BR) ad augmentum variarum variabilium physiologicarum et biochemicarum ducere (Peleg et Blumwald, 2011; Yin et al. Ren, 2011; Mitler et al., 2012; Zhou et al., 2014). In Columbia, applicatio exogena opum geneticarum et eius impetus in culturas oryzae nondum plene intellecta et investigata est. Attamen, studium prius demonstravit aspersionem foliarem BR tolerantiam oryzae emendare posse per meliorationem proprietatum commutationis gasorum, contenti chlorophylli vel prolini foliorum plantularum oryzae (Quintero-Calderón et al., 2021).
Cytokinina responsa plantarum ad accentus abioticos, inter quos accentus caloris, mediantur (Ha et al., 2012). Praeterea, relatum est applicationem exogenam CK damnum thermalem reducere posse. Exempli gratia, applicatio exogena zeatini ratem photosyntheticam, contentum chlorophylli a et b, et efficaciam translationis electronum in *Agrotis estolonifera* repente (*Agrotis estolonifera*) durante accentu caloris auxit (*Xu et Huang, 2009; Jespersen et Huang, 2015*). Applicatio exogena zeatini etiam actionem antioxidantem emendare, synthesim variarum proteinarum augere, damnum specierum oxygenii reactivarum (ROS) et productionem malondialdehydi (MDA) in textibus plantarum reducere potest (*Chernyadyev*, 2009; Yang et al., 2009, 2016; Kumar et al., 2020).
Usus acidi gibberellici etiam responsionem positivam ad accentum caloris demonstravit. Studia demonstraverunt biosynthesis acidi gibberellici varias vias metabolicas mediari et tolerantiam sub condicionibus temperaturae altae augere (Alonso-Ramirez et al. 2009; Khan et al. 2020). Abdel-Nabi et al. (2020) invenerunt aspersionem foliarem acidi gibberellici exogeni (25 vel 50 mg*L) posse augere ratem photosyntheticam et actionem antioxidantem in plantis aurantiorum calore affectis comparatis cum plantis testibus. Observatum est etiam applicationem exogenam acidi gibberellici augere contentum humiditatis relativum, contentum chlorophylli et carotenoidum et minuere peroxidationem lipidorum in palma dactylifera (Phoenix dactylifera) sub calore affecta (Khan et al., 2020). Auxin etiam munus grave agit in regulandis responsionibus accretionis adaptivis ad condiciones temperaturae altae (Sun et al., 2012; Wang et al., 2016). Hic regulator incrementi ut index biochemicus in variis processibus agit, ut in synthesi prolini vel degradatione sub pressione abiotica (Ali et al. 2007). Praeterea, AUX etiam actionem antioxidantem auget, quae ad decrementum MDA in plantis propter peroxidationem lipidorum imminutam ducit (Bielach et al., 2017). Sergeev et al. (2018) observaverunt in plantis pisorum (Pisum sativum) sub pressione caloris, contentum prolini – dimethylaminoethoxycarbonylmethyl)naphthylchloromethyl aetheris (TA-14) augeri. In eodem experimento, etiam inferiores gradus MDA in plantis tractatis comparatis cum plantis non tractatis cum AUX observaverunt.
Brassinosteroida sunt alia classis regulatorum incrementi quae ad effectus stressis caloris mitigandos adhibentur. Ogweno et al. (2008) rettulerunt aspersionem BR exogenam ratem photosyntheticam nettam, conductantiam stomatum et maximam ratem carboxylationis Rubisco plantarum lycopersici (Solanum lycopersicum) sub stresse caloris per octo dies auxisse. Aspersio foliaris epibrassinosteroidum potest ratem photosyntheticam nettam plantarum cucumeris (Cucumis sativus) sub stresse caloris augere (Yu et al., 2004). Praeterea, applicatio exogena BR degradationem chlorophylli moratur et efficientiam usus aquae et maximum proventum quanticum photochemiae PSII in plantis sub stresse caloris auget (Holá et al., 2010; Toussagunpanit et al., 2015).
Ob mutatio climatis et variabilitatis, fruges oryzae sunt periodi magnorum cotidianorum calores (Lesk et al., 2016; Garcés, 2020; Federarroz (Federación Nacional de Arroceros), 2021). In plantis phaenotypis, usus phytonutrientium vel biostimulantium pervestigatum est ut militarium calorum leniendi accentus in locis oryzae crescentibus (Alvarado-Sanabria et al., 2017; Calderón-Páez et al., 2021; Quintero-Calderón et al., 2021). Praeterea, usus variabilium biochemicarum et physiologicarum (temperatura foliorum, conductantia stomatum, parametrorum fluorescentiae chlorophylli, chlorophylli et contentum aquae relativum, synthesis malondialdehydi et prolini) instrumentum fidum est ad plantas oryzae sub stresse caloris localiter et internationaliter examinandas (Sánchez-Reynoso et al., 2014; Alvarado-Sanabria et al., 2017; Attamen, investigatio de usu pulverisationum phytohormonalium foliarum in oryza in gradu locali rara manet. Ergo, studium reactionum physiologicarum et biochemicarum applicationis regulatorum incrementi plantarum magni momenti est ad proponendas strategias agronomicas practicas ad hoc tractandum. Propositum igitur huius studii erat aestimare effectus physiologicos (conductantiam stomatum, parametrorum fluorescentiae chlorophylli et contentum aquae relativum) et biochemicos applicationis foliaris quattuor regulatorum incrementi plantarum (AUX, CK, GA et BR). (Pigmenta photosynthetica, contenta malondialdehydi et prolini) Variabiles in duabus oryzae commercialibus. genotypa calori coniuncto (temperaturis altis diurnis/nocturnis) subiecta.
In hoc studio, duo experimenta independentia peracta sunt. Genotypa Federrose 67 (F67: genotypa sub temperaturis altis per ultimum decennium evoluta) et Federrose 2000 (F2000: genotypa in ultimo decennio saeculi XX evoluta resistentiam contra virus folii albi ostendens) primum adhibita sunt. [semina.] et secundum experimentum, respective. Utraque genotypa late a agricolis Columbianis coluntur. Semina in alveolis 10-L (longitudine 39.6 cm, latitudine 28.8 cm, altitudo 16.8 cm) continentibus solum arenosum limosum cum 2% materiae organicae sata sunt. Quinque semina praegerminata in utroque alveolo sata sunt. Palettae in tepidario Facultatis Scientiarum Agriculturae Universitatis Nationalis Columbiae, in campo Bogotá (43°50′56″ N, 74°04′051″ W), altitudine 2556 m supra mare (asl) posita sunt. m.) et ab Octobri ad Decembrem 2019 peracta sunt. Unum experimentum (Federroz 67) et secundum experimentum (Federroz 2000) eodem tempore anni 2020.
Conditiones ambientales in tepidario per singulas tempestates plantationis hae sunt: temperatura diurna et nocturna 30/25°C, humiditas relativa 60~80%, photoperiodus naturalis 12 horae (radiatio photosynthetice activa 1500 µmol (photona) m-2 s-). 1 hora meridie). Plantae stercoratae sunt secundum contentum cuiusque elementi 20 diebus post emergentiam seminum (DAE), secundum Sánchez-Reinoso et al. (2019): 670 mg nitrogenii per plantam, 110 mg phosphori per plantam, 350 mg kalium per plantam, 68 mg calcii per plantam, 20 mg magnesii per plantam, 20 mg sulfuris per plantam, 17 mg silicii per plantam. Plantae continent 10 mg bori per plantam, 17 mg cupri per plantam, et 44 mg zinci per plantam. Plantae oryzae ad 47 DAE in singulis experimentis conservatae sunt cum stadium phenologicum V5 per hoc tempus attigerunt. Studia priora demonstraverunt hoc stadium phaenologicum tempus aptum esse ad studia tensionis caloris in oryza peragenda (Sánchez-Reinoso et al., 2014; Alvarado-Sanabria et al., 2017).
In unoquoque experimento, duae applicationes separatae regulatoris incrementi foliorum peractae sunt. Prima series aspersionum phytohormonum foliariorum quinque diebus ante curationem stressis caloris (42 DAE) applicata est ad plantas ad stress ambiental praeparandas. Secunda aspersio foliaris deinde quinque diebus postquam plantae conditionibus stressis expositae sunt (52 DAE) data est. Quattuor phytohormona adhibita sunt et proprietates cuiusque ingredientis activi in hoc studio aspersi in Tabula Supplementi 1 enumerantur. Concentrationes regulatoris incrementi foliorum adhibitae erant hae: (i) Auxin (acidum 1-naphthylaceticum: NAA) ad concentrationem 5 × 10⁻⁵ M (ii) 5 × 10⁻⁵ M gibberellinum (acidum gibberellicum: NAA); GA3); (iii) Cytokininum (trans-zeatinum) 1 × 10⁻⁵ M (iv) Brassinosteroida [Spirostan-6-onum, 3,5-dihydroxy-, (3b,5a,25R)] 5 × 10⁻⁵; M. Hae concentrationes electae sunt quia responsa positiva inducunt et resistentiam plantarum ad accentum caloris augent (Zahir et al., 2001; Wen et al., 2010; El-Bassiony et al., 2012; Salehifar et al., 2017). Oryzae plantae sine ullis aspersionibus regulatoribus incrementi plantarum sola aqua destillata tractatae sunt. Omnes oryzae plantae aspersione manuali aspersae sunt. 20 ml H₂O plantae applica ut superficies superiores et inferiores foliorum humectentur. Omnes aspersiones foliares adiuvante agriculturali (Agrotin, Bayer CropScience, Columbia) ad 0.1% (v/v) utebantur. Distantia inter vas et aspersorem est 30 cm.
Curae contra calorem administratae sunt quinque diebus post primam irrorationem foliarem (47 DAE) in quoque experimento. Plantae oryzae e tepidario ad cameram crescentiae 294 L (MLR-351H, Sanyo, IL, USA) translatae sunt ut calor stabiliretur vel easdem condiciones ambientales conservarentur (47 DAE). Curatio coniuncta contra calorem peracta est cameram ad sequentes temperaturas diurnas/nocturnas constituendo: temperaturam maximam diurnam [40°C per quinque horas (ab 11:00 ad 16:00)] et periodum nocturnam [30°C per quinque horas]. Octo dies continuos (ab 19:00 ad 24:00). Temperatura et tempus expositionis selecta sunt secundum studia priora (Sánchez-Reynoso et al. 2014; Alvarado-Sanabría et al. 2017). Ex altera parte, grex plantarum in cameram crescentiae translatae in tepidario eadem temperatura (30°C interdiu/25°C noctu) per octo dies continuos servatae sunt.
In fine experimenti, hae catervae curationum obtentae sunt: (i) conditio temperaturae crescentiae + applicatio aquae destillatae [Modus Absolutus (AC)], (ii) conditio stressis caloris + applicatio aquae destillatae [Modus Stress Caloris (SC)], (iii) conditio stressis caloris + applicatio auxini (AUX), (iv) conditio stressis caloris + applicatio gibberellini (GA), (v) conditio stressis caloris + applicatio cytokinini (CK), et (vi) conditio stressis caloris + brassinosteroidum (BR) (Appendix). Hae catervae curationum pro duobus genotypis (F67 et F2000) adhibitae sunt. Omnes curationes consilio omnino aleatorio cum quinque replicationibus peractae sunt, quarum unaquaeque ex una planta constabat. Quaeque planta adhibita est ad variabiles in fine experimenti determinatas legendas. Experimentum 55 DAE duravit.
Conductantia stomatum (gs) mensurata est porosometro portatili (SC-1, METER Group Inc., USA) a 0 ad 1000 mmol m-2 s-1, cum apertura camerae speciminis 6.35 mm. Mensurae capiuntur affixo specillo stomametrico ad folio maturo, cuius germen principale plantae plene expansum est. Pro singulis curationibus, lectiones gs in tribus foliis cuiusque plantae inter horas undecimam et sextam captae et media computatae sunt.
Pondus RWC determinatum est secundum methodum a Ghoulam et al. (2002) descriptam. Charta plene expansa ad g determinandum adhibita etiam ad RWC metiendum adhibita est. Pondus recens (FW) statim post messem per stateram digitalem determinatum est. Folia deinde in vase plastico aqua repleto posita et in tenebris ad temperaturam ambientem (22°C) per 48 horas relicta sunt. Tum in statera digitali ponderata et pondus expansum (TW) notatum est. Folia tumida in furno ad 75°C per 48 horas siccata sunt et pondus eorum siccum (DW) notatum est.
Relativum chlorophylli contentum determinatum est utens chlorophyllimetro (atLeafmeter, FT Green LLC, USA) et expressum in unitatibus atLeaf (Dey et al., 2016). Maximae lectiones efficientiae quanticae PSII (ratio Fv/Fm) notatae sunt utens chlorophyllifluorimetro excitationis continuae (Handy PEA, Hansatech Instruments, UK). Folia ad obscuritatem adaptata sunt utens fibulis foliorum per 20 minuta ante mensuras Fv/Fm (Restrepo-Diaz et Garces-Varon, 2013). Postquam folia ad obscuritatem acclimatata sunt, linea basalis (F0) et maxima fluorescentia (Fm) mensuratae sunt. Ex his datis, fluorescentia variabilis (Fv = Fm – F0), ratio fluorescentiae variabilis ad maximam fluorescentiam (Fv/Fm), maximus proventus quanticus photochemiae PSII (Fv/F0) et ratio Fm/F0 calculatae sunt (Baker, 2008; Lee et al., 2017). Lectiones relativae chlorophylli et fluorescentiae chlorophylli in iisdem foliis ad mensuras gs adhibitis captae sunt.
Circiter 800 mg ponderis recentis foliorum ut variabiles biochemicae collecta sunt. Exempla foliorum deinde in nitrogenio liquido homogeneizata et ad ulteriorem analysin conservata sunt. Methodus spectrometrica ad aestimandum chlorophyllum a, b et carotenoidum textuum adhibita innititur methodo et aequationibus a Wellburn (1994) descriptis. Exempla textuum foliorum (30 mg) collecta et in 3 ml acetoni 80% homogeneizata sunt. Exempla deinde centrifugata sunt (model 420101, Becton Dickinson Primary Care Diagnostics, USA) ad 5000 rpm per 10 min ad particulas removendas. Supernatans ad volumen finale 6 ml dilutum est addendo acetonum 80% (Sims et Gamon, 2002). Chlorophylli contentum ad 663 (chlorophyllum a) et 646 (chlorophyllum b) nm, carotenoidum autem ad 470 nm spectrophotometro (Spectronic BioMate 3 UV-vis, Thermo, USA) determinatum est.
Methodus acidi thiobarbiturici (TBA) a Hodges et al. (1999) descripta adhibita est ad peroxidationem lipidorum membranae (MDA) aestimandam. Circiter 0.3 g textus foliorum etiam in nitrogenio liquido homogeneizata sunt. Exemplaria centrifugata sunt ad 5000 rpm et absorptio mensurata est in spectrophotometro ad 440, 532 et 600 nm. Denique concentratio MDA calculata est utens coefficiente extinctionis (157 M mL⁻¹).
Contentum prolini omnium curationum determinatum est methodo a Bates et al. (1973) descripta. Adde 10 ml solutionis aquosae 3% acidi sulfosalicylici ad exemplum conditum et per chartam filtratoriam Whatman (No. 2) filtra. Deinde 2 ml huius filtrati cum 2 ml acidi ninhydrici et 2 ml acidi acetici glacialis reacta sunt. Mixtura in balneo aquae ad 90°C per horam unam posita est. Reactionem siste incubando in glacie. Tubum fortiter agita vortice et solutionem resultantem dissolve in 4 ml tolueni. Lectiones absorptionis ad 520 nm determinatae sunt eodem spectrophotometro adhibito ad quantificationem pigmentorum photosyntheticorum (Spectronic BioMate 3 UV-Vis, Thermo, Madison, WI, USA).
Methodus a Gerhards et al. (2016) descripta ad temperaturam canopi et CSI calculandam. Photographiae thermales camera FLIR 2 (FLIR Systems Inc., Boston, MA, USA) cum accuratione ±2°C in fine periodi stressis captae sunt. Superficies alba post plantam ad photographandum ponenda est. Iterum, duae officinae ut exempla referentiali consideratae sunt. Plantae in superficie alba positae sunt; una adiuvante agriculturae (Agrotin, Bayer CropScience, Bogotá, Columbia) oblita est ad aperturam omnium stomata simulandam [modus humidus (Twet)], et altera folium sine ulla applicatione erat [modus siccus (Tdry)] (Castro-Duque et al., 2020). Distantia inter cameram et ollam durante filmatione erat 1 m.
Index tolerantiae relativae indirecte calculatus est, conductantia stomatali (gs) plantarum tractatarum comparatarum cum plantis comparationis (plantis sine curationibus stressis et cum regulatoribus incrementi applicatis) ad tolerantiam genotyporum tractatorum in hoc studio aestimatorum determinandam. Index tolerantiae relativae (RTI) obtentus est, aequatione ex Chávez-Arias et al. (2020) adaptata.
In unoquoque experimento, omnes variabiles physiologicae supra memoratae determinatae et ad 55 DAE notatae sunt, foliis plene expansis e summo tegmine collectis utens. Praeterea, mensurae in camera crescentiae peractae sunt ne condiciones ambientales, in quibus plantae crescunt, mutarentur.
Data ex primo et secundo experimento simul tanquam series experimentorum analysata sunt. Quaeque caterva experimentalis quinque plantis constabat, et quaeque planta unitatem experimentalem constituebat. Analysis variantiae (ANOVA) peracta est (P ≤ 0.05). Cum differentiae significantes detectae sunt, experimentum comparativum post hoc Tukey ad P ≤ 0.05 adhibitum est. Functio arcsinus ad valores percentuales convertendos adhibita est. Data per programmatum Statistix v 9.0 (Analytical Software, Tallahassee, FL, USA) analysata et per SigmaPlot (versionis 10.0; Systat Software, San Jose, CA, USA) delineata sunt. Analysis componentium principalium per programmatum InfoStat 2016 (Analysis Software, National University of Cordoba, Argentina) peracta est ad optimos regulatores incrementi plantarum sub studio identificandos.
Tabula 1 ANOVA summatim exhibet, experimenta, varias curationes, et interactiones earum cum pigmentis photosyntheticis foliorum (chlorophyllo a, b, totali, et carotenoidibus), malondialdehydo (MDA) et contento prolini, et conductantia stomatis ostendens. Effectus gs, contenti aquae relativi (RWC), contenti chlorophylli, parametrorum fluorescentiae chlorophylli alpha, temperaturae coronae (PCT) (°C), indicis stressis segetis (CSI) et indicis tolerantiae relativae plantarum oryzae ad 55 DAE.
Tabula 1. Summarium datorum ANOVA de variabilibus physiologicis et biochemicis oryzae inter experimenta (genotypa) et curationes stressis caloris.
Differentiae (P≤0.01) in interactionibus pigmenti photosynthetici foliorum, contento chlorophylli relativo (lectionibus Atleaf), et parametris fluorescentiae alpha-chlorophylli inter experimenta et curationes in Tabula 2 monstrantur. Temperaturae altae diurnae et nocturnae contenta chlorophylli totalia et carotenoidum auxerunt. Plantulae oryzae sine ulla aspersione foliari phytohormonum (2.36 mg g-1 pro "F67" et 2.56 mg g-1 pro "F2000") comparatae cum plantis sub condicionibus temperaturae optimalis cultis (2.67 mg g-1) contentum chlorophylli totalium inferiorem ostenderunt. In utroque experimento, "F67" 2.80 mg g-1 et "F2000" 2.80 mg g-1 erat. Praeterea, oryzae plantulae, quae cum combinatione AUX et GA aspersionum sub calore tractatae sunt, etiam diminutionem chlorophylli contenti in utroque genotypo ostenderunt (AUX = 1.96 mg g⁻¹ et GA = 1.45 mg g⁻¹ pro "F67"; AUX = 1.96 mg g⁻¹ et GA = 1.45 mg g⁻¹ pro "F67"; AUX = 2.24 mg g⁻¹ et GA = 1.43 mg g⁻¹ (pro "F2000") sub condicionibus caloris. Sub condicionibus caloris, tractatio foliaris cum BR leve augmentum huius variabilis in utroque genotypo effecit. Denique, CK aspersio foliaris altissimas valores pigmenti photosynthetici inter omnes tractationes (tractationes AUX, GA, BR, SC et AC) in genotypis F67 (3.24 mg g⁻¹) et F2000 (3.65 mg g⁻¹). Relativum chlorophylli contentum (unitas Atleaf) etiam a calore coniuncto imminutum est. Valores maximi etiam in plantis CC aspersis in utroque genotypo notati sunt (41.66 pro "F67" et 49.30 pro "F2000"). Proportiones Fv et Fv/Fm differentias significantes inter curationes et cultivares ostenderunt (Tabula 2). In universum, inter has variabiles, cultivar F67 minus obnoxius erat calore quam cultivar F2000. Proportiones Fv et Fv/Fm plus in secundo experimento passae sunt. Plantae 'F2000' affectae, quae nullis phytohormonibus aspersae sunt, valores Fv infimos (2120.15) et rationes Fv/Fm (0.59) habuerunt, sed aspersio foliaris CK hos valores restituere adiuvit (Fv: 2591,89, proportio Fv/Fm: 0.73). , lectiones similes illis accipiens quae in plantis “F2000” sub condicionibus temperaturae optimalis cultis notatae sunt (Fv: 2955.35, proportio Fv/Fm: 0.73:0.72). Nullae differentiae significantes in fluorescentia initiali (F0), maxima fluorescentia (Fm), maximo proventu photochemico quantico PSII (Fv/F0) et proportione Fm/F0 observatae sunt. Denique, BR similem inclinationem ostendit ac cum CK observata est (Fv 2545.06, proportio Fv/Fm 0.73).
Tabula II. Effectus tensionis caloris coniunctae (40°/30°C die/nocte) in pigmenta photosynthetica foliorum [chlorophyllum totale (Chl Total), chlorophyllum a (Chl a), chlorophyllum b (Chl b) et effectus carotenoidum Cx+c]], contentum chlorophylli relativum (unitas Atliff), parametri fluorescentiae chlorophylli (fluorescentia initialis (F0), fluorescentia maxima (Fm), fluorescentia variabilis (Fv), efficacia maxima PSII (Fv/Fm), proventus photochemicus maximus quanticus PSII (Fv/F0) et Fm/F0 in plantis duorum genotyporum oryzae [Federrose 67 (F67) et Federrose 2000 (F2000)] 55 diebus post emergentiam (DAE)).
Aqua relativa (RWC) plantarum oryzae diverse tractatarum differentias (P ≤ 0.05) in interactione inter curationes experimentales et foliares ostendit (Fig. 1A). Cum SA tractatae, valores infimi pro utroque genotypo notati sunt (74.01% pro F67 et 76.6% pro F2000). Sub condicionibus stressis caloris, RWC plantarum oryzae utriusque genotypi cum diversis phytohormonibus tractatarum significanter aucta est. Summa summarum, applicationes foliares CK, GA, AUX, vel BR RWC ad valores similes iis plantarum sub condicionibus optimis per experimentum cultarum auxerunt. Plantae moderatrices absolutae et plantae foliis aspersae valores circa 83% pro utroque genotypo notaverunt. Ex altera parte, gs etiam differentias significantes (P ≤ 0.01) in interactione experimenti-curationis ostendit (Fig. 1B). Planta moderationis absolutae (AC) etiam valores maximos pro quolibet genotypo rettulit (440.65 mmol m-2s-1 pro F67 et 511.02 mmol m-2s-1 pro F2000). Plantae oryzae, quae solum calorem coniunctum subierunt, valores gs infimos pro utroque genotypo ostenderunt (150.60 mmol m-2s-1 pro F67 et 171.32 mmol m-2s-1 pro F2000). Tractatio foliaris cum omnibus regulatoribus incrementi plantarum etiam g auxit. In plantis oryzae F2000 CC aspersis, effectus aspersionis foliaris cum phytohormonibus clarior erat. Hic grex plantarum nullas differentias ostendit comparatus cum plantis moderationis absolutae (AC 511.02 et CC 499.25 mmol m-2s-1).
Figura 1. Effectus tensionis caloris coniunctae (40°/30°C die/nocte) in contentum aquae relativum (RWC) (A), conductantiam stomatum (gs) (B), productionem malondialdehydi (MDA) (C), et contentum prolini (D) in plantis duorum genotyporum oryzae (F67 et F2000) post 55 dies post emergentiam (DAE). Curationes pro quolibet genotypo aestimatae incluserunt: imperium absolutum (AC), imperium tensionis caloris (SC), tensionem caloris + auxinum (AUX), tensionem caloris + gibberellinum (GA), tensionem caloris + mitogenum cellulare (CK), et tensionem caloris + brassinosteroidum (BR). Quaeque columna medium ± errorem vexillum quinque punctorum datorum repraesentat (n = 5). Columnae litteris diversis secutae differentias statistice significantes secundum probationem Tukey indicant (P ≤ 0.05). Litterae cum signo aequali indicant mediam non esse statistice significantem (≤ 0.05).
Contentum MDA (P ≤ 0.01) et prolini (P ≤ 0.01) etiam differentias significantes in interactione inter experimentum et curationes phytohormonum ostendit (Fig. 1C, D). Peroxidatio lipidorum aucta cum curatione SC in utroque genotypo observata est (Figura 1C), attamen plantae cum aspersione regulatoris incrementi foliorum tractatae peroxidationem lipidorum imminutam in utroque genotypo ostenderunt; In genere, usus phytohormonum (CA, AUC, BR vel GA) ad diminutionem peroxidationis lipidorum (contentum MDA) ducit. Nullae differentiae inventae sunt inter plantas AC duorum genotyporum et plantas sub calore stressatas et phytohormonibus aspersas (valores FW observati in plantis "F67" a 4.38–6.77 µmol g⁻¹ variabant, et in plantis FW "F2000" valores observati a 2.84–9.18 µmol g⁻¹ variabant). Contra, synthesis prolini in plantis "F67" minor erat quam in plantis "F2000" sub calore stressato, quod ad augmentum productionis prolini duxit. In plantis oryzae calore stressatis, in utroque experimento, observatum est administrationem horum hormonum significanter contentum aminoacidorum plantarum F2000 auxisse (AUX et BR 30.44 et 18.34 µmol g⁻¹ respective erant) (Fig. 1G).
Effectus aspersionis regulatoris incrementi plantarum foliaris et tensionis caloris coniunctae in temperaturam canopi plantarum et indicem tolerantiae relativae (RTI) in Figuris 2A et B monstrantur. Pro utroque genotypo, temperatura canopi plantarum AC proxima 27°C erat, et plantarum SC circa 28°C. Observatum etiam est curationes foliares cum CK et BR diminutionem 2-3°C in temperatura canopi comparatas cum plantis SC effecisse (Figura 2A). RTI similem modum aliis variabilibus physiologicis exhibuit, differentias significantes (P ≤ 0.01) in interactione inter experimentum et curationem ostendens (Figura 2B). Plantae SC tolerantiam plantarum inferiorem in utroque genotypo ostenderunt (34.18% et 33.52% pro plantis oryzae "F67" et "F2000", respective). Alimentatio foliaris phytohormonum RTI in plantis tensioni temperaturae altae expositis emendat. Hic effectus magis conspicuus erat in plantis "F2000" cum CC aspersis, in quibus RTI 97.69 erat. Contra, differentiae significantes tantum in indice tensionis proventus (ICS) plantarum oryzae sub condicionibus tensionis factorum foliarium aspergendarum (P ≤ 0.01) (Fig. 2B) observatae sunt. Solae plantae oryzae tensioni caloris complexae subiectae maximum valorem indicis tensionis (0.816) ostenderunt. Cum plantae oryzae variis phytohormonibus aspergebantur, index tensionis inferior erat (valores ab 0.6 ad 0.67). Denique, planta oryzae sub condicionibus optimis culta valorem 0.138 habuit.
Figura 2. Effectus tensionis caloris coniunctae (40°/30°C die/nocte) in temperaturam canopi (A), indicem tolerantiae relativae (RTI) (B), et indicem tensionis segetis (CSI) (C) duarum specierum plantarum. Genotypi oryzae commercialis (F67 et F2000) diversis curationibus caloris subiecti sunt. Curationes pro quolibet genotypo aestimatae incluserunt: imperium absolutum (AC), imperium tensionis caloris (SC), tensionem caloris + auxinum (AUX), tensionem caloris + gibberellinum (GA), tensionem caloris + mitogenum cellulare (CK), et tensionem caloris + brassinosteroidum (BR). Tensio caloris coniuncta plantas oryzae temperaturis altis die/nocte (40°/30°C die/nocte) exponere implicat. Quaeque columna mediam ± errorem standardem quinque punctorum datorum repraesentat (n = 5). Columnae litteris diversis secutae differentias statistice significantes secundum probationem Tukey indicant (P ≤ 0.05). Litterae cum signo aequali indicant mediam non esse statistice significantem (≤ 0.05).
Analysis principalium componentium (PCA) revelavit variabiles ad 55 DAE aestimatas 66.1% responsionum physiologicarum et biochemicarum plantarum oryzae calore stressatarum, quae cum aspersione regulatoris incrementi tractatae sunt, explicari (Fig. 3). Vectores variabiles repraesentant et puncta regulatores incrementi plantarum (GRs). Vectores gs, contenti chlorophylli, maximae efficientiae quanticae PSII (Fv/Fm) et parametrorum biochemicorum (TChl, MDA et prolina) ad angulos proximos ad originem sunt, quod correlationem magnam inter mores physiologicos plantarum et easdem variabiles indicat. Unus grex (V) plantulas oryzae temperatura optima (AT) cultas et plantas F2000 cum CK et BA tractatas comprehendit. Simul, maior pars plantarum cum GR tractatarum gregem separatum (IV) formavit, et tractatio cum GA in F2000 gregem separatum (II) formavit. Contra, plantulae oryzae calore stressatae (greges I et III) sine ulla aspersione foliari phytohormonum (ambae genotypae SC erant) in zona opposita gregi V sitae sunt, quod effectum stressis caloris in physiologiam plantarum demonstravit. .
Figura 3. Analysis bigraphica effectuum tensionis caloris coniunctae (40°/30°C die/nocte) in plantis duorum genotyporum oryzae (F67 et F2000) post dies 55 post emergentiam (DAE). Abbreviationes: AC F67, imperium absolutum F67; SC F67, moderatio tensionis caloris F67; AUX F67, tensio caloris + auxinum F67; GA F67, tensio caloris + gibberellinum F67; CK F67, tensio caloris + divisio cellularis. BR F67, tensio caloris + brassinosteroidum F67; AC F2000, imperium absolutum F2000; SC F2000, Moderatio Tensionis Caloris F2000; AUX F2000, tensio caloris + auxinum F2000; GA F2000, tensio caloris + gibberellinum F2000. CK F2000, pressio caloris + cytokinin, BR F2000, pressio caloris + steroidum aeneum; F2000.
Variabiles ut contentum chlorophylli, conductans stomatis, proportio Fv/Fm, CSI, MDA, RTI et contentum prolini adiuvare possunt ad intellegendam adaptationem genotyporum oryzae et ad aestimandum impulsum strategiarum agronomicarum sub stresse caloris (Sarsu et al., 2018; Quintero-Calderon et al., 2021). Propositum huius experimenti erat aestimare effectum applicationis quattuor regulatorum incrementi in parametros physiologicos et biochemicos plantularum oryzae sub condicionibus stressis caloris complexis. Examen plantularum est methodus simplex et celeris ad aestimationem simultaneam plantarum oryzae secundum magnitudinem vel condicionem infrastructurae praesto (Sarsu et al. 2018). Resultata huius studii demonstraverunt stress caloris coniunctum diversas responsiones physiologicas et biochemicas in duobus genotypis oryzae inducere, processum adaptationis indicantes. Haec resultata etiam indicant aspersiones regulatorum incrementi foliaris (praesertim cytokinina et brassinosteroida) oryzae adiuvare ad adaptandum stressi caloris complexo, cum favor praecipue afficiat gs, RWC, proportionem Fv/Fm, pigmenta photosynthetica et contentum prolini.
Applicatio regulatorum incrementi adiuvat ad statum aquae plantarum oryzae sub tensione caloris emendandum, quae fortasse cum tensione altiore et temperaturis inferioribus canopi plantarum coniungitur. Hoc studium demonstravit inter plantas "F2000" (genotypum susceptibilem), plantas oryzae praesertim cum CK vel BR tractatas valores gs altiores et valores PCT inferiores habuisse quam plantas cum SC tractatas. Studia priora etiam demonstraverunt gs et PCT esse indices physiologicos accuratos qui responsum adaptivum plantarum oryzae et effectus strategiarum agronomicarum in tensione caloris determinare possunt (Restrepo-Diaz et Garces-Varon, 2013; Sarsu et al., 2018; Quintero). -Carr DeLong et al., 2021). CK vel BR folii g sub tensione augent quia haec hormona plantarum aperturam stomatum per interactiones syntheticas cum aliis moleculis signalantibus, ut ABA (promotor clausurae stomatum sub tensione abiotica), promovere possunt (Macková et al., 2013; Zhou et al., 2013). (, 2014). Apertura stomatum refrigerationem foliorum promovet et temperaturas canopi reducet (Sonjaroon et al., 2018; Quintero-Calderón et al., 2021). Ob has causas, temperatura canopi plantarum oryzae CK vel BR aspersarum sub calore coniuncto inferior esse potest.
Pressio temperaturae altae potest pigmentum photosyntheticum foliorum minuere (Chen et al., 2017; Ahammed et al., 2018). In hoc studio, cum oryzae plantae sub pressione caloris essent neque ullis regulatoribus incrementi plantarum aspersae essent, pigmenta photosynthetica in utroque genotypo decrescere solebant (Tabula 2). Feng et al. (2013) etiam significantem diminutionem in contento chlorophylli in foliis duorum genotyporum tritici pressione caloris exposita rettulerunt. Expositio temperaturis altis saepe in contento chlorophylli diminuto evenit, quod fortasse ob biosynthesis chlorophylli diminutam, degradationem pigmentorum, vel eorum effectus coniunctos sub pressione caloris oritur (Fahad et al., 2017). Attamen, oryzae plantae praecipue CK et BA tractatae concentrationem pigmentorum photosyntheticorum foliorum sub pressione caloris auxerunt. Similia etiam a Jespersen et Huang (2015) et Suchsagunpanit et al. relata sunt. (2015), qui augmentum chlorophylli foliorum post applicationem zeatini et hormonum epibrassinosteroideorum in *Eryngium esculentum* et *Oryza* calore affectis, respective, observaverunt. Explicatio rationabilis cur CK et BR auctum chlorophylli foliorum sub calore coniuncto promoveant est quod CK initium inductionis sustentae promotorum expressionis (velut promotor senescentiae activans (SAG12) vel promotor HSP18) augere et iacturam chlorophylli in foliis reducere potest, senescentiam foliorum retardare et resistentiam plantarum ad calorem augere (Liu et al., 2020). BR chlorophyllum foliorum protegere et chlorophylli foliorum augere potest per activationem vel inductionem synthesis enzymorum in biosynthesi chlorophylli sub condicionibus stressis implicatorum (Sharma et al., 2017; Siddiqui et al., 2018). Denique, duo phytohormona (CK et BR) etiam expressionem proteinorum impetus caloris promovent et varios processus adaptationis metabolicae, ut auctam biosynthesis chlorophylli, emendant (Sharma et al., 2017; Liu et al., 2020).
Parametri fluorescentiae chlorophylli a modum celerem et non destructivum praebent qui tolerantiam plantarum vel adaptationem ad condiciones stressis abioticas aestimare potest (Chaerle et al. 2007; Kalaji et al. 2017). Parametri sicut proportio Fv/Fm ut indices adaptationis plantarum ad condiciones stressis adhibiti sunt (Alvarado-Sanabria et al. 2017; Chavez-Arias et al. 2020). In hoc studio, plantae SC valores infimos huius variabilis ostenderunt, praesertim plantae oryzae "F2000". Yin et al. (2010) etiam invenerunt proportionem Fv/Fm foliorum oryzae altissime florentium significanter decrevisse temperaturis supra 35°C. Secundum Feng et al. (2013), proportio Fv/Fm inferior sub stresse caloris indicat ratem capturae et conversionis energiae excitationis a centro reactionis PSII reductam esse, quod indicat centrum reactionis PSII sub stresse caloris disintegrari. Haec observatio nobis permittit concludere perturbationes in apparatu photosynthetico magis in varietatibus sensibilibus (Fedearroz 2000) quam in varietatibus resistentibus (Fedearroz 67) esse conspicuas.
Usus CK vel BR plerumque auxit efficaciam PSII sub condicionibus complexis stressis caloris. Similia a Suchsagunpanit et al. (2015) consecuti sunt, qui observaverunt applicationem BR efficaciam PSII sub stresse caloris in oryza auxisse. Kumar et al. (2020) etiam invenerunt plantas ciceris cum CK (6-benzyladenino) tractatas et stressui caloris subiectas rationem Fv/Fm auxisse, concludentes applicationem foliarem CK per activationem cycli pigmenti zeaxanthini activitatem PSII promovere. Praeterea, aspersio foliorum BR photosynthesis PSII sub condicionibus stressis compositis favit, indicando applicationem huius phytohormoni dissipationem minorem energiae excitationis antennarum PSII effecisse et accumulationem parvarum proteinarum impetus caloris in chloroplastis promovisse (Ogweno et al. 2008; Kothari et Lachowitz (2021).
Contenta MDA et prolini saepe augentur cum plantae sub pressione abiotica sunt, comparatae cum plantis sub condicionibus optimis cultis (Alvarado-Sanabria et al. 2017). Studia priora etiam demonstraverunt gradus MDA et prolini esse indices biochemicos qui adhiberi possunt ad intellegendum processum adaptationis vel impulsum practicarum agronomicarum in oryza sub temperaturis diurnis vel nocturnis altis (Alvarado-Sanabria et al., 2017; Quintero-Calderón et al., 2021). Haec studia etiam demonstraverunt contenta MDA et prolini maiora esse solere in plantis oryzae temperaturis altis noctu vel interdiu respective expositis. Attamen, aspersio foliaris CK et BR contulit ad diminutionem MDA et augmentum graduum prolini, praesertim in genotypo tolerante (Federroz 67). Aspersio CK potest promovere superexpressionem cytokinin oxidasis/dehydrogenasis, ita augens contentum compositorum protectorum, ut betaini et prolini (Liu et al., 2020). BR inductionem osmoprotectorum, ut betainum, saccharorum, et aminoacidorum (prolinum liberum inclusum), promovet, aequilibrium osmoticum cellulare sub multis condicionibus ambientalibus adversis servans (Kothari et Lachowiec, 2021).
Index stressus segetis (CSI) et index tolerantiae relativae (RTI) adhibentur ad determinandum utrum curationes aestimatae varias stresses (abioticas et bioticas) mitigare adiuvent et effectum positivum in physiologiam plantarum habeant (Castro-Duque et al., 2020; Chavez-Arias et al., 2020). Valores CSI a 0 ad 1 variari possunt, condiciones non stressantes et stressantes respective repraesentantes (Lee et al., 2010). Valores CSI plantarum calore stressatarum (SC) a 0.8 ad 0.9 variabant (Figura 2B), indicantes plantas oryzae negative affectas esse a stressu combinato. Attamen, aspersio foliaris BC (0.6) vel CK (0.6) praecipue ad diminutionem huius indicatoris sub condicionibus stressus abiotici comparatis cum plantis oryzae SC duxit. In plantis F2000, RTI (Return Input Input) maiorem incrementum ostendit cum CA (97.69%) et BC (60.73%) adhibitis comparatis cum SA (33.52%), indicando hos moderatores incrementi plantarum etiam conferre ad meliorem responsionem oryzae ad tolerantiam compositionis. Aestus nimii. Hi indices propositi sunt ad condiciones stressis in diversis speciebus moderandas. Studium a Lee et al. (2010) factum ostendit CSI duarum varietatum gossypii sub moderato stresse aquae fuisse circa 0.85, cum valores CSI varietatum bene irrigatarum inter 0.4 et 0.6 variarent, concludens hunc indicem esse indicatorem adaptationis aquae varietatum ad condiciones stressantes. Praeterea, Chavez-Arias et al. (2020) efficaciam elicitorum syntheticorum ut strategiam comprehensivam moderationis stressis in plantis C. elegans aestimaverunt et invenerunt plantas his compositis aspersas RTI altiorem (65%) demonstravisse. Quoad supradicta, CK et BR tamquam strategiae agronomicae ad tolerantiam oryzae erga accentum caloris complexum augendam spectantes considerari possunt, cum hi moderatores incrementi plantarum responsa biochemica et physiologica positiva inducant.
Per annos proximos, investigatio oryzae in Columbia in aestimandis genotypis tolerantibus temperaturis diurnis vel nocturnis altis, per proprietates physiologicas vel biochemicas, intenta est (Sánchez-Reinoso et al., 2014; Alvarado-Sanabria et al., 2021). Attamen, per annos proximos, analysis technologiarum practicarum, oeconomicarum et lucrativarum magis magisque momenti facta est ad proponendam administrationem integratam segetum ad effectus periodorum complexarum stressoris caloris in patria emendandos (Calderón-Páez et al., 2021; Quintero-Calderon et al., 2021). Itaque, responsa physiologica et biochemica plantarum oryzae ad stressorem caloris complexum (40°C die/30°C nocte) in hoc studio observata suggerunt aspersionem foliarem cum CK vel BR methodum aptam administrationis segetum esse posse ad effectus adversos mitigandos. Effectus periodorum stressoris caloris moderati. Hae curationes tolerantiam utriusque genotypi oryzae (CSI humilis et RTI altus) auxerunt, demonstrantes inclinationem generalem in responsis physiologicis et biochemicis plantarum sub stressore caloris coniuncto. Praecipua responsio plantarum oryzae fuit diminutio contenti GC, chlorophylli totalis, chlorophyllorum α et β et carotenoidum. Praeterea, plantae laesione PSII (parametri fluorescentiae chlorophylli, ut proportio Fv/Fm, imminutis) et peroxidatione lipidorum aucta laborant. Contra, cum oryza CK et BR tractata est, hi effectus negativi mitigati sunt et contentum prolini auctum est (Fig. 4).
Figura 4. Exemplar conceptuale effectuum coniunctae tensionis caloris et applicationis foliaris regulatoris incrementi plantarum in oryzae plantis. Sagittae rubrae et caeruleae indicant effectus negativos vel positivos interactionis inter tensionem caloris et applicationem foliarem BR (brassinosteroidis) et CK (cytokinini) in responsa physiologica et biochemica, respective. gs: conductantia stomatum; Chl Totalis: contentum chlorophylli totale; Chl α: contentum chlorophylli β; Cx+c: contentum carotenoidum;
Summa summarum, responsa physiologica et biochemica in hoc studio indicant plantas oryzae Fedearroz 2000 magis obnoxias esse periodo stressoris caloris complexi quam plantas oryzae Fedearroz 67. Omnes regulatores incrementi in hoc studio aestimati (auxina, gibberellina, cytokinina, vel brassinosteroida) aliquem gradum reductionis stressoris caloris combinati demonstraverunt. Attamen, cytokinina et brassinosteroida meliorem adaptationem plantarum induxerunt, cum ambo regulatores incrementi plantarum contentum chlorophylli, parametros fluorescentiae alpha-chlorophylli, gs et RWC auxerunt comparatis plantis oryzae sine ulla applicatione, et etiam contentum MDA et temperaturam canopi diminuerunt. Summa summarum, concludimus usum regulatorum incrementi plantarum (cytokininorum et brassinosteroidum) instrumentum utile esse in moderandis condicionibus stressoris in culturis oryzae causatis a stressore caloris gravi per periodos altarum temperaturarum.
Materia originalis in studio exhibita cum articulo includitur, et interrogationes ulteriores ad auctorem correspondentem dirigi possunt.
Tempus publicationis: VIII Augusti, MMXXIV